<!DOCTYPE article
PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.4 20190208//EN"
       "JATS-journalpublishing1.dtd">
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" article-type="research-article" dtd-version="1.4" xml:lang="en">
 <front>
  <journal-meta>
   <journal-id journal-id-type="publisher-id">Bulletin of KSAU</journal-id>
   <journal-title-group>
    <journal-title xml:lang="en">Bulletin of KSAU</journal-title>
    <trans-title-group xml:lang="ru">
     <trans-title>Вестник КрасГАУ</trans-title>
    </trans-title-group>
   </journal-title-group>
   <issn publication-format="print">1819-4036</issn>
  </journal-meta>
  <article-meta>
   <article-id pub-id-type="publisher-id">96406</article-id>
   <article-id pub-id-type="doi">10.36718/1819-4036-2025-7-259-273</article-id>
   <article-id pub-id-type="edn">igwhwi</article-id>
   <article-categories>
    <subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru">
     <subject>Пищевые технологии</subject>
    </subj-group>
    <subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en">
     <subject>Food technology</subject>
    </subj-group>
    <subj-group>
     <subject>Пищевые технологии</subject>
    </subj-group>
   </article-categories>
   <title-group>
    <article-title xml:lang="en">METHODS OF PRODUCING CAROTENOIDS AND DEVELOPMENT OF DYE TECHNOLOGY BASED ON IT</article-title>
    <trans-title-group xml:lang="ru">
     <trans-title>СПОСОБЫ ПОЛУЧЕНИЯ КАРОТИНОИДНОГО ПИГМЕНТА И РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИИ КРАСИТЕЛЯ НА ЕГО ОСНОВЕ</trans-title>
    </trans-title-group>
   </title-group>
   <contrib-group content-type="authors">
    <contrib contrib-type="author">
     <name-alternatives>
      <name xml:lang="ru">
       <surname>Чеснокова</surname>
       <given-names>Наталья Юрьевна</given-names>
      </name>
      <name xml:lang="en">
       <surname>Chesnokova</surname>
       <given-names>Natal'ya Yur'evna</given-names>
      </name>
     </name-alternatives>
     <email>chesnokova.nyu@dvfu.ru</email>
     <xref ref-type="aff" rid="aff-1"/>
    </contrib>
    <contrib contrib-type="author">
     <name-alternatives>
      <name xml:lang="ru">
       <surname>Кузнецова</surname>
       <given-names>Алла Алексеевна</given-names>
      </name>
      <name xml:lang="en">
       <surname>Kuznetsova</surname>
       <given-names>Alla Alekseevna</given-names>
      </name>
     </name-alternatives>
     <email>kuznetsova.aa@dvfu.ru</email>
    </contrib>
    <contrib contrib-type="author">
     <name-alternatives>
      <name xml:lang="ru">
       <surname>Танашкина</surname>
       <given-names>Татьяна Владимировна</given-names>
      </name>
      <name xml:lang="en">
       <surname>Tanashkina</surname>
       <given-names>Tatyana Vladimirovna</given-names>
      </name>
     </name-alternatives>
     <email>tanashkina.tv@dvfu.ru</email>
    </contrib>
    <contrib contrib-type="author">
     <name-alternatives>
      <name xml:lang="ru">
       <surname>Кушнаренко</surname>
       <given-names>Людмила Владимировна</given-names>
      </name>
      <name xml:lang="en">
       <surname>Kushnarenko</surname>
       <given-names>Lyudmila Vladimirovna</given-names>
      </name>
     </name-alternatives>
     <email>kushnarenko.lv@dvfu.ru</email>
    </contrib>
   </contrib-group>
   <aff-alternatives id="aff-1">
    <aff>
     <institution xml:lang="ru">Дальневосточный федеральный университет</institution>
    </aff>
    <aff>
     <institution xml:lang="en">Far Eastern Federal University</institution>
    </aff>
   </aff-alternatives>
   <pub-date publication-format="print" date-type="pub" iso-8601-date="2025-08-20T00:00:00+03:00">
    <day>20</day>
    <month>08</month>
    <year>2025</year>
   </pub-date>
   <pub-date publication-format="electronic" date-type="pub" iso-8601-date="2025-08-20T00:00:00+03:00">
    <day>20</day>
    <month>08</month>
    <year>2025</year>
   </pub-date>
   <issue>7</issue>
   <fpage>259</fpage>
   <lpage>273</lpage>
   <history>
    <date date-type="received" iso-8601-date="2025-03-20T00:00:00+03:00">
     <day>20</day>
     <month>03</month>
     <year>2025</year>
    </date>
   </history>
   <self-uri xlink:href="https://sej.kgau.ru/en/nauka/article/96406/view">https://sej.kgau.ru/en/nauka/article/96406/view</self-uri>
   <abstract xml:lang="ru">
    <p>Цель исследования – поиск эффективных способов выделения каротиноидов, позволяющих наиболее полно экстрагировать пигмент из растительного сырья, а также создание на его основе натурального красителя, обладающего способностью к окрашиванию различных групп пищевых продуктов. Применение полярных растворителей и их смесей способствовало более эффективному извлечению каротиноидного пигмента из мякоти тыквы. Наименьшую экстрагирующую способность продемонстрировал 95 % этанол, поскольку он обладает меньшей полярностью. Содержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин) в растворе при его использовании составило 17,34 мг%. Применение этилацетата и ацетона в качестве экстрагентов позволило повысить эффективность извлечения пигмента в 3 и 8 раз соответственно. При этом содержание каротиноидов в растворах достигало 24,85 мг% при использовании этилацетата и 39,53 мг% при экстрагировании ацетоном. Оптимальным вариантом среди смесей растворителей оказалась комбинация этилацетата и 95 % этанола в соотношении 1 : 1, при которой содержание каротиноидного пигмента достигло 37,58 мг%. Использование ультразвука оказало незначительное влияние на эффективность извлечения каротиноидов. С использованием наиболее эффективных экстрагентов и их смесей была разработана технология получения каротиноидного красителя. Данная технология включает этапы экстрагирования, концентрирования экстрактов и их последующую лиофильную сушку. Полученный каротиноидный краситель представляет собой порошок ярко-желтого цвета с содержанием каротиноидного пигмента 50,56 мг%. Приобретенные в процессе производства гидрофильные свойства красителя позволяют значительно расширить возможности использования ранее гидрофобных каротиноидов для окрашивания различных пищевых продуктов.</p>
   </abstract>
   <trans-abstract xml:lang="en">
    <p>The aim of the study is to find effective methods for isolating carotenoids that would allow for the most complete extraction of pigment from plant materials, as well as to create a natural dye on its basis that would be able to color various groups of food products. The use of polar solvents and their mixtures contributed to a more effective extraction of carotenoid pigment from pumpkin pulp. The lowest extraction capacity was demonstrated by 95 % ethanol, since it has less polarity. The content of carotenoids (in terms of β-carotene) in the solution when using it was 17.34 mg%. The use of ethyl acetate and acetone as extractants made it possible to increase the efficiency of pigment extraction by 3 and 8 times, respectively. The content of carotenoids in solutions reached 24.85 mg% when using ethyl acetate and 39.53 mg% when extracted with acetone. The optimal option among the solvent mixtures was a combination of ethyl acetate and 95 % ethanol in a ratio of 1:1, in which the content of carotenoid pigment reached 37.58 mg%. The use of ultrasound had little effect on the efficiency of carotenoid extraction. Using the most effective extractants and their mixtures, a technology for obtaining a carotenoid dye was developed. This technology includes the stages of extraction, concentration of extracts and their subsequent lyophilic drying. The resulting carotenoid dye is a bright yellow powder with a carotenoid pigment content of 50.56 mg%. The hydrophilic properties of the dye acquired during the production process make it possible to significantly expand the possibilities of using previously hydrophobic carotenoids for coloring various food products.</p>
   </trans-abstract>
   <kwd-group xml:lang="ru">
    <kwd>каротиноидный пигмент</kwd>
    <kwd>β-каротин</kwd>
    <kwd>каротиноидный краситель</kwd>
    <kwd>мякоть тыквы</kwd>
    <kwd>экстрагент</kwd>
   </kwd-group>
   <kwd-group xml:lang="en">
    <kwd>carotenoid pigment</kwd>
    <kwd>β-carotene</kwd>
    <kwd>carotenoid dye</kwd>
    <kwd>pumpkin pulp</kwd>
    <kwd>extractant</kwd>
   </kwd-group>
   <funding-group>
    <funding-statement xml:lang="ru">личное</funding-statement>
   </funding-group>
  </article-meta>
 </front>
 <body>
  <p>Введение. Каротиноиды являются жирорастворимыми пигментами, обеспечивающими большое разнообразие цветовых характеристик не только растительных организмов, но также грибов и бактерий. Данные пигменты являются полиизопреновыми соединениями, в составе которых восемь изопреновых звеньев. На основании этого их относят к группе тетратерпеноидов. Наиболее характерной чертой каротиноидов является наличие сопряженных двойных связей, которые образуют центральную часть молекулы. Каротиноиды насчитывают около 700 соединений, которые можно классифицировать на бескислородные – каротины (α-каротин, β-каротин, ликопин и др.) и окисленные – ксантофиллы, в молекулах которых присутствует кислород в составе спиртовой, кето- или эпоксидной группы (лютеин, зеаксантин, фукоксантин, β-криптоксантин и др.) [1]. Химические и структурные формулы некоторых каротиноидов представлены в таблице 1. Таблица 1 Химические и структурные формулы некоторых каротиноидов Chemical structure of some carotenoids Тривиальное названиеЭмпирическая формулаСтруктурная формулаБескислородные α-каротинC40H56 β-каротинC40H56 ОкисленныеЛютеинC40H56O2 ЗеаксантинC40H56O2 β-криптоксантинC40H56O  В зеленых растениях каротиноиды находятся в хлоропластах, однако наибольшее их содержание наблюдается в хромопластах корней, цветков и плодов.Каротиноиды обладают выраженной антиоксидантной способностью и терапевтической активностью. Поэтому включение в питание человека растительной пищи, богатой каротиноидами, может значительно снизить риск возникновения некоторых заболеваний, таких как онкологические, сердечно-сосудистые, возрастная макулярная дегенерация и катаракта [2–6].Между тем каротиноиды могут рассматриваться как красители, поскольку они способны окрашивать пищевые продукты в желтые, оранжевые или красные цвета [7, 8], а также сохранять цвет изделия во время технологической обработки, усиливать уже имеющуюся окраску продукта, обогащать его биологически активными соединениями [9].Одним из наиболее ценных источников каротиноидов является тыква. Общее содержание каротиноидов в тыкве варьирует в пределах от 234,21 до 404,98 мг в 100 г продукта [10, 11]. Такой широкий диапазон значений может зависеть от сорта и вида сырья (генетических особенностей), почвенно-климатических условий, а также процедуры экстракции (способа, типа растворителя и т. д.).Поскольку каротиноидные пигменты, благодаря углеводородной структуре, являются гидрофобными соединениями, самыми популярными способами их извлечения из растительного сырья являются методы с использованием органических растворителей и растительных масел. В настоящее время н-гексан является одним из наиболее используемых растворителей. Однако растворители нефтехимического происхождения являются токсичными соединениями и поэтому строго регулируются техническими регламентами ЕАЭС041/2017«О безопасности химической продукции», а также Европейского парламента и Совета ЕС (REACH), согласно которым происходит разрешение или ограничение к применению данных химических веществ [9, 12]. Поэтому поиск эффективных способов экстрагирования с использованием менее токсичных растворителей, способных проникать в растительную ткань и экстрагировать каротиноиды, находящиеся в структуре хлоропласта, является актуальным.Цель исследования – поиск эффективных способов выделения каротиноидов, позволяющих наиболее полно экстрагировать пигмент из растительного сырья, а также создание на его основе натурального красителя, обладающего способностью к окрашиванию различных групп пищевых продуктов.Задачи: определить экстрагенты и рациональные условия экстрагирования каротиноидов из мякоти тыквы, а также на основе экстрактов каротиноидного пигмента разработать технологию натурального красителя, обладающего способностью к окрашиванию различных групп пищевых продуктов.Объекты и методы. В качестве объектов исследования в данной работе рассматривались тыква детская деликатесная, экстракты каротиноидов и каротиноидный краситель. Подготовка сырья включала промывание свежих плодов тыквы, их очистку от кожуры, нарезку на кубики размером 1 × 1 см и последующее пюрирование в измельчителе тканей в течение 5 мин до получения однородной массы.Экстрагирование каротиноидов проводилось водой при температурах 25 и 50 °С 95 % этанолом и рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом при комнатной температуре. Во всех случаях соотношение сырья к растворителю составляло 1 : 5, а процесс длился 30 мин при постоянном перемешивании.Ультразвуковую экстракцию каротиноидов 95 % этанолом проводили при температуре 25 °C в течение 10–30 мин, рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом в течение 30 мин с использованием ультразвуковой ванны Сапфир (Россия) при частоте воздействия 25 кГц и мощности 150 Вт.Экстрагирование с применением полярных растворителей (95 % этанол, ацетон, этилацетат) и их смесей в различных соотношениях проводилось при комнатной температуре в течение 30 мин при постоянном перемешивании.Для оценки интенсивности окраски экстрактов каротиноидов измеряли их оптическую плотность на спектрофотометре UV–1800 Shimadzu (Япония) в диапазоне длин волн 280–700 нм.Каротиноидный краситель получали путем концентрирования каротиноидного экстракта на вакуумном (роторном) испарителе Hei-VAP Advantage ML/G3B (Германия) до уменьшения объема в 5 раз. Затем концентрат подвергали лиофильной сушке на установке Martin Christ Alpha 2-4 LSCplus (Германия) до получения порошка.Для исследования структуры полученного порошка и экстракта каротиноидов использовали инфракрасный спектрофотометр IRTracer-100 (Shimadzu, Япония).Количественное содержание каротиноидов в экстрактах и красителе определяли спектрофотометрическим методом в перерасчете на β-каротин согласно методике, предложенной П.П. Ветровым [13].Все измерения проводились в четырехкратной повторности с последующим вычислением стандартной ошибки эксперимента.Результаты и их обсуждение. Поскольку условия экстракции и свойства экстрагента значительно влияют на получение биологически активных соединений из растительного сырья [11, 14, 15], было рассмотрено четыре способа извлечения каротиноидов из мякоти тыквы. В качестве экстрагентов использовали воду при температурах 25 и 50 °С, 95 % этиловый спирт и рафинированное дезодорированное подсолнечное масло. УФ-спектры растворов каротиноидов, полученных данными способами, представлены на рисунке 1. Содержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин) в экстрактах, полученных с использованием различных условий выделения и экстрагентов, приведено в таблице 2.    Рис. 1. УФ-спектры растворов каротиноидов, выделенных из мякоти тыквы различнымиспособами: 1 – 95 % этанол; 2 – подсолнечное масло; 3 – экстрагирование водой при 50 °С;4 – экстрагирование водой при 25 °СUV-vis spectra of carotenoid solutions isolated from pumpkin by various methods: 1 – 95 % ethanol;2 – sunflower oil; 3 – extraction with water at 50 °C; 4 – extraction with water at 25 °C Таблица 2Содержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин), выделенныхиз мякоти тыквы различными способамиContent of carotenoids in terms of β-carotene isolated from pumpkin by various methods НомеробразцаЭкстрагентТемпература, °ССодержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин), мг%195 % этиловый спирт2515,32±0,012Подсолнечное масло2513,36±0,013Вода508,94±0,014Вода253,43±0,02  Полученные результаты свидетельствуют о том, что при всех методах экстракции каротиноиды демонстрируют максимумы поглощения в диапазоне длин волн 420–480 нм.Наибольшее количество каротиноидов из мякоти тыквы извлекается при использовании 95 % этилового спирта, при этом их содержание в растворе достигает 15,32 мг%. Данные литературы также подтверждают эффективность 95 % этанола для выделения каротиноидных пигментов из растительного сырья [16].Учитывая, что каротиноиды являются жирорастворимыми соединениями, в ходе исследования также была проведена их экстракция рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом. При таком методе экстракции содержание каротиноидов составило 13,36 мг%, что в 1,2 раза меньше, чем при использовании 95 % этанола.Экстракция каротиноидов с использованием воды оказалась менее эффективной. При выделении каротиноидов водой при 25 и 50 °C их содержание в растворе составляет 8,94 и 3,43 мг%, что соответственно в 2 и 4 раза ниже, чем при экстрагировании пигментов 95 % этиловым спиртом.Исследования наличия трех экстремумов на кривых позволяет предположить состав каротиноидов в экстракте из мякоти тыквы. Согласно литературным данным [17], максимумы при длинах волн 423, 450 и 472 нм соответствуют присутствующим в составе экстрактов α-каротину, β-каротину и лютеину.Таким образом, в результате данного исследования было определено, что наилучшими экстрагентами каротиноидов из мякоти тыквы являются 95 % этиловый спирт и рафинированное дезодорированное подсолнечное масло. Использование воды в качестве экстрагента для выделения каротиноидов не рекомендуется.В литературных источниках отмечена эффективность использования ультразвука для извлечения биологически активных соединений из растительного сырья [18–20], позволяющего при более низких температурах и сокращении продолжительности экстрагирования получать ценные и качественные соединения. В целях поиска наиболее рациональных условий процесса экстрагирования в работе было изучено влияние ультразвука на выход каротиноидов из мякоти тыквы, при использовании 95 % этилового спирта и рафинированного дезодорированного подсолнечного масла. Ультразвуковую экстракцию каротиноидов 95 % этиловым спиртом проводили при температуре 25 °C в течение 10, 20 и 30 мин, рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом в течение 30 мин при комнатной температуре. Для сравнения были подготовлены контрольные образцы растворов каротиноидов, экстрагированных 95 % этиловым спиртом и рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом без воздействия ультразвука. УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных этиловым спиртом и рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом с применением ультразвука, представлены на рисунках 2 и 3. Содержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин) при экстрагировании 95 % этанолом и рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом под воздействием ультразвуковой обработки разной продолжительности представлено в таблице 3.    Рис. 2. УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных 95 % этаноломпод воздействием ультразвука: 1 – 30 мин; 2 – 20 мин; 3 – 10 мин; 4 – контрольный образецUV-vis spectra of carotenoid solutions extracted with 95 % ethanol under ultrasound: 1 – 30 min; 2 – 20 min; 3 – 10 min; 4 – control sample  Рис. 3. УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом под воздействием ультразвука: 1 – 30 мин; 2 – контрольный образецUV spectra of carotenoid solutions extracted with refined deodorized sunflower oil underthe influence of ultrasound:1 – 30 min; 2 – control sampleТаблица3Содержание каротиноидов при экстрагировании 95 % этиловым спиртом и рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом под воздействием ультразвуковой обработки разной продолжительностиCarotenoid content when extracted with 95 % ethyl alcohol and refined deodorized sunflower oil under the influence of ultrasonic treatment  Номер образцаСпособ экстрагированияПродолжительность экстрагирования, минСодержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин), мг%1Экстрагирование 95 % этанолом под воздействием ультразвука1018,55±0,012Экстрагирование 95 % этанолом под воздействием ультразвука2019,46±0,013Экстрагирование 95 % этанолом под воздействием ультразвука3019,71±0,014Экстрагирование 95 % этанолом 3018,20±0,015Экстрагирование рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом под воздействием ультразвука 30 14,34±0,016Экстрагирование рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом3013,95±0,02  На рисунках 2 и 3 видно, что воздействие ультразвука оказывает незначительное положительное влияние на экстрагирование каротиноидов из мякоти тыквы. При обработке ультразвуком в течение 10, 20 и 30 мин содержание каротиноидов, экстрагированных 95 % этиловым спиртом, составляет 18,55; 19,46 и 19,71 мг% соответственно. В контрольном образце, экстрагированном 95 % этиловым спиртом, содержание каротиноидов оказалось ниже – 18,20 мг%.Аналогичная тенденция наблюдается при ультразвуковой экстракции каротиноидов рафинированным дезодорированным подсолнечным маслом (см. рис. 3). Содержание каротиноидов в образце, подвергнутом ультразвуковой обработке, на 3 % выше, чем в контрольном, и составляет 14,34 и 13,95 мг% соответственно. Полученные результаты соответствуют данным литературных источников [21], где также показано незначительное повышение содержания каротиноидов в растворе после ультразвуковой обработки.Таким образом, применение ультразвука для выделения каротиноидов оказывает лишь незначительное влияние на извлечение пигмента из мякоти тыквы, что делает этот метод малоперспективным для их экстрагирования.Поскольку выбор экстрагента для выделения биологически активных соединений играет важную роль, к нему должны предъявляться определенные требования. Экстрагент должен обладать высокой экстракционной способностью и избирательностью по отношению к конкретным биологически активным веществам [22]. В связи с этим в ходе исследования был проведен подбор наиболее эффективных экстрагентов для выделения каротиноидов из мякоти тыквы. В качестве полярных растворителей в работе использовались 95 % этиловый спирт, ацетон, этилацетат, а также их смеси. УФ-спектры растворов каротиноидов, полученных с применением указанных растворителей, а также их смесей, представлены на рисунках 4 и 5. Содержание каротиноидов, экстрагированных различными экстрагентами и их комбинациями, приведено в таблицах 4 и 5.    Рис. 4. УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных из мякоти тыквыразличными растворителями: 1 – ацетон; 2 – этилацетат; 3 – 95 % этанолUV-vis spectra of carotenoid solutions extracted from pumpkin with different solvents: 1 – acetone; 2 – ethyl acetate; 3 – 95 % ethanol   Рис. 5. УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных из мякоти тыквы смесями растворителей: 1 – этилацетат/95 % этанол 1 : 1; 2 – этилацетат/95 % этанол 1,0 : 0,5;3 – этилацетат/95 % этанол 0,5 : 1,0; 4 – этилацетат/95 % этанол 3 : 1; 5 – этилацетат/95 % этанол 1 : 3; 6 – 95 % этанолUV-vis spectra of carotenoid solutions extracted from pumpkin with solvent mixtures: 1 – ethyl acetate/95 % ethanol 1 :1; 2 – ethyl acetate/95 % ethanol 1 : 0.5; 3 – ethyl acetate/95 % ethanol 0.5 : 1; 4 – ethyl acetate/95 % ethanol 3 : 1; 5 – ethyl acetate/95 % ethanol 1 : 3; 6 – 95 % ethanolТаблица 4Содержание каротиноидов, экстрагированныхиз мякоти тыквы различными органическими растворителямиContent of carotenoids extracted from pumpkin with various organic solvents НомеробразцаРастворительСодержание каротиноидов(в пересчете на β-каротин), мг%1Ацетон39,53±0,012Этилацетат24,85±0,01395 % этанол17,34±0,01 Таблица 5Содержание каротиноидов, экстрагированных из мякоти тыквы комбинациями растворителейContent of carotenoids extracted from pumpkin with solvent mixtures Номер образцаКоличество 95 % этанола, млКоличество этилацетата, млСодержание каротиноидов(в перерасчете на β-каротин), мг%18837,59±0,01261035,39±0,01310632,96±0,01441228,25±0,01512427,05±0,01616016,00±0,01  Из полученных результатов видно, что экстрагирование каротиноидов ацетоном показало наилучший результат. Содержание каротиноидов в экстракте при данном способе выделения составляет 39,53 мг%. Применение этилацетата в качестве экстрагента привело к снижению эффективности экстракции на 39 %, при этом содержание каротиноидов в экстракте составило 24,85 мг%. Наименее результативным оказался 95 % этиловый спирт. Его применение обеспечило содержание каротиноидов в растворе на уровне 17,34 мг%, что в два раза ниже по сравнению с ацетоном.Вероятно, различия в полярности растворителей определяют их способность к экстрагированию каротиноидов. Поскольку этиловый спирт является менее полярным по сравнению с ацетоном и этилацетатом, его экстрагирующая способность оказалась наименьшей.Применение смесей этилацетата и 95 % этилового спирта позволяет повысить выход каротиноидов в раствор (см. рис. 4). Представленные результаты показывают, что наибольшая эффективность экстракции наблюдалась при использовании смеси этих экстрагентов в равных пропорциях. При таком соотношении содержание каротиноидов в экстракте составило 37,59 мг%. Отклонение от этого соотношения в сторону увеличения или уменьшения доли одного из компонентов приводило к снижению эффективности экстракции. Минимальное содержание каротиноидов (27,05 мг%) было зафиксировано при соотношении этилацетата и спирта 1 : 3.Таким образом, наилучшие результаты по выделению каротиноидов из мякоти тыквы достигаются при использовании ацетона либо смеси этилацетата и 95 % этилового спирта в соотношении 1 : 1.Высокая степень экстрагирования и насыщенный цвет полученных экстрактов позволяют использовать их для создания натуральных красителей, которые могут служить альтернативой синтетическим в пищевой промышленности.Процесс производства каротиноидного красителя из мякоти тыквы включает следующие этапы: пюрирование сырья, экстракцию пигмента полярными растворителями или их смесями, центрифугирование экстрактов с отделением плотной фазы, концентрирование в 5 раз с использованием вакуумного (роторного) испарителя и последующую лиофильную сушку. Этот метод обеспечивает полное удаление летучего экстрагента и получение порошкообразного продукта ярко-желтого цвета. Технологическая схема производства натурального каротиноидного красителя из мякоти тыквы представлена на рисунке 5.Внешний вид разработанного каротиноидного красителя представлен на рисунке 6. Показатели качества натурального каротиноидного красителя представлены в таблице 5.   Рис. 5. Технологическая схема получения каротиноидного красителя из мякоти тыквыTechnology of obtaining carotenoid dye from pumpkin    Рис. 6. Внешний вид разработанного каротиноидного красителяAppearance of the developed carotenoid dye Таблица 5Органолептические и физико-химические показатели качествакаротиноидного красителяOrganoleptic and physicochemical quality indicators of carotenoid dye ПоказательХарактеристикаОрганолептические показателиВнешний вид и цветМелкий рассыпчатый порошок ярко желтого цвета ЗапахТыквенныйВкусСладкий, тыквенныйФизико-химические показателиСодержание каротиноидов(в перерасчете на β-каротина), мг%50,56Растворимость Водорастворим, полная растворимостьСроки годностиНе более 9 месяцев при температурах 4–6 °С Результаты исследования показали, что полученный натуральный каротиноидный краситель представляет собой порошок ярко-желтого цвета (см. рис. 6) с легким тыквенным ароматом и вкусом. Содержание каротиноидов (в перерасчете на β-каротин) в данном красителе составляет 50,56 мг%. Срок хранения красителя не превышает 9 мес. при температурах от 4 до 6 °C.Также установлено, что разработанный каротиноидный краситель обладает хорошей растворимостью в воде, но практически не растворяется в масляных растворах (рис. 7). Приобретение гидрофильных свойств в процессе производства расширяет возможности использования данного красителя в пищевой промышленности, позволяя применять его для окрашивания различных групп пищевых продуктов.УФ-спектры натурального каротиноидного красителя, а также экстрактов каротиноидов и водного раствора тыквенного красителя фирмы MIXIE представлены на рисунке 8.     Рис. 7. Растворимость разработанного красителяSolubility of carotenoid dye   Рис. 8. УФ-спектры водного раствора тыквенного красителя фирмы MIXIE (1),экстрактов каротиноидов, выделенных спиртом (2) и водным раствором (4),разработанного каротиноидного красителя (3)UV-vis spectra of an aqueous solution of pumpkin dye from MIXIE (1), carotenoid extracts isolatedwith alcohol (2) and an aqueous solution (4), developedcarotenoiddye (3)  Анализ данных, представленных на рисунке 8, показывает, что УФ-спектр водного раствора тыквенного красителя фирмы MIXIE (кривая 1) содержит один экстремум, указывающий присутствие в растворе β-каротина.УФ-спектр разработанного каротиноидного красителя (кривая 3), а также УФ-спектры растворов каротиноидов, экстрагированных из мякоти тыквы этиловым спиртом (кривая 2) и водным раствором (кривая 4), демонстрируют три четко выраженных максимума. Однако на кривой 3 наблюдается смещение максимумов поглощения. Как правило, это связывают с присутствием в исследуемом сырье суммы каротиноидов либо с изменением их растворимости [23]. Вероятно, в процессе производства красителя пигменты подвергаются термоокислению, в результате чего гидрофобные углеводородные каротиноиды окисляются до гидрофильных гидроксилсодержащих соединений. Это приводит к изменению их гидрофобно-гидрофильного баланса. В ходе вакуумной сушки под воздействием органического растворителя, кислорода воздуха и повышенной температуры в углеводородную структуру каротиноидов могут встраиваться атомы кислорода. Это приводит к усилению диполь-дипольных взаимодействий и образованию водородных связей с молекулами воды, а также снижению действия сил Ван-дер-Ваальса за счет уменьшения молекулярной массы пигмента [23]. Данный процесс сопровождается увеличением содержания гидрофильных окисленных ксантофиллов, таких как зеаксантин, неоксантин и другие.Повышенное содержание ксантофиллов в разработанном красителе подтверждено анализом ИК-спектров экстракта каротиноидов и полученного красителя (рис. 9).    Рис. 9. ИК-спектры экстракта каротиноидов (1) и разработанного каротиноидного красителя (2)IR spectra of carotenoid extract (1) and carotenoid dye (2)  ИК-спектры обоих образцов демонстрируют характерные полосы поглощения в диапазоне 600–3900 см⁻¹. Колебания в области 2940 см⁻¹ в сочетании с полосами в пределах 1650–1400 см⁻¹ и 1100–650 см⁻¹ указывают на присутствие полиеновой цепи в молекуле каротиноидов [24, 25].Появление полос в диапазоне 3300–3450 см⁻¹ свидетельствует о наличии в молекуле каротиноидов О-Н и С-О групп, характерных для кислородсодержащих ксантофиллов. Дополнительные пики в диапазоне 1300–650 см⁻¹ могут быть связаны как с каротиноидами, так и с ксантофиллами [26]. При этом в данном спектральном интервале отмечаются различия, что указывает на увеличение числа окисленных групп в структуре красителя. Этот факт, вероятно, обусловлен протеканием термоокислительных процессов в ходе производства красителя, в результате которых гидрофобные бескислородные каротиноиды превращаются в гидрофильные окисленные ксантофиллы.Заключение. В ходе исследования проведен поиск рациональных условий экстрагирования каротиноидного пигмента с целью наиболее полного его извлечения из мякоти тыквы. Установлено, что эффективность экстрагирования каротиноидов зависит от полярности растворителя. 95 % этанол, являясь менее полярным растворителем по сравнению с ацетоном и этилацетатом, обладает наименьшей экстрагирующей способностью. Показана эффективность использования смесей растворителей для экстрагирования каротиноидов из мякоти тыквы. Наилучший результат показало соотношение этилацетата и этанола, равное 1 : 1. Определено, что малоэффективным способом экстрагирования каротиноидов из растительного сырья является ультразвуковая экстракция. С использованием наиболее эффективных экстрагентов и их смесей была разработана технология получения каротиноидного красителя. Данная технология включает этапы экстрагирования, концентрирования экстрактов и их последующую лиофильную сушку. Полученный каротиноидный краситель представляет собой рассыпчатый порошок желтого цвета, содержащий в своем составе комплекс каротиноидов. Хорошая растворимость разработанного каротиноидного красителя в воде позволяет расширить сферу использования гидрофобных красителей для окрашивания различных групп пищевых продуктов.</p>
 </body>
 <back>
  <ref-list>
   <ref id="B1">
    <label>1.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Riaz M., Zia-Ul-Haq M., Dou D. Chemistry of carotenoids. In: Carotenoids: structure and function in the human body. 2021. P. 43–76. DOI: 10.1007/978-3-030-46459-2_2.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Riaz M, Zia-Ul-Haq M, Dou D. Chemistry of carotenoids. In: Carotenoids: structure and function in the human body. 2021. DOI: 10.1007/978-3-030-46459-2_2</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B2">
    <label>2.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Al-Sharqawi A., Osman A., El-Sayed A., et al. Effectiveness of pumpkin seed aqueous extract as an anticancer // Zagazig Journal of Agricultural Research. 2024. Vol. 51, № 5. P. 1085–1094. DOI: 10.17420/ap6604.289.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Al-Sharqawi A, Osman A, El-Sayed A, et al. Effectiveness of pumpkin seed aqueous extract as an anticancer. Zagazig Journal of Agricultural Research. 2024;51(5):1085-1094. DOI: 10.17420/ap6604.289.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B3">
    <label>3.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Batool M., Ranjha M., Roobab U., et al. Nutritional value, phytochemical potential, and therapeutic benefits of pumpkin (Cucurbita sp.) // Plants. 2022. Vol. 11, № 11. P. 1394. DOI: 10.3390/plants 11111394.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Batool M, Ranjha M, Roobab U, et al. Nutritional value, phytochemical potential, and therapeutic benefits of pumpkin (Cucurbita sp.). Plants. 2022;11(11):1394. DOI: 10.3390/plants11111394.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B4">
    <label>4.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Kaur S., Panghal A., Garg M., et al. Functional and nutraceutical properties of pumpkin–a review // Nutrition and Food Science. 2020. Vol. 50, № 2. P. 384–401. DOI: 10.1108/NFS-05-2019-0143.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Kaur S, Panghal A, Garg M, et al. Functional and nutraceutical properties of pumpkin – a review. Nutrition &amp; Food Science. 2020;50(2):384-401. DOI: 10.1108/NFS-05-2019-0143.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B5">
    <label>5.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Konrade D., Spalvins K. Extraction of bioactives from pumpkin by-products and determination of their antioxidant activity // Research for rural development. 2022. Vol. 37. P. 106–114. DOI: 10.22616/rrd. 28.2022.016.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Konrade D, Spalvins K. Extraction of bioactives from pumpkin by-products and determination of their antioxidant activity. Research for rural development. 2022;37:106-114. DOI: 10.22616/rrd.28.2022.016.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B6">
    <label>6.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Bieżanowska-Kopeć R., Ambroszczyk A., Piątkowska E., et al. Nutritional value and antioxidant activity of fresh pumpkin flowers (Cucurbita sp.) grown in Poland // Applied Sciences. 2022. Vol. 12, № 13. P. 6673. DOI: 10.3390/app12136673.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Bieżanowska-Kopeć R, Ambroszczyk A, Piątkowska E, et al. Nutritional value and antioxidant activity of fresh pumpkin flowers (Cucurbita sp.) grown in Poland. Applied Sciences. 2022;12(13):6673. DOI: 10.3390/app12136673.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B7">
    <label>7.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Atencio S., Verkempinck S., Reineke K., et al. Heat and light stability of pumpkin-based carotenoids in a photosensitive food: a carotenoid-coloured beverage // Foods. 2022. Vol. 11, № 3. P. 485. DOI: 10.3390/foods11030485.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Atencio S, Verkempinck S, Reineke K, et al. Heat and light stability of pumpkin-based carotenoids in a photosensitive food: a carotenoid-coloured beverage. Foods. 2022;11(3):485. DOI: 10.3390/foods 11030485.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B8">
    <label>8.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Chandrika U. Carotenoid Dyes – Properties and Production. Handbook of Natural Colorants; 2023. DOI: 10.1002/9780470744970.ch13.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Chandrika U. Carotenoid Dyes – Properties and Production. Handbook of Natural Colorants; 2023. DOI: 10.1002/9780470744970.ch13.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B9">
    <label>9.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Yara-Varon E., Fabiano-Tixier A., Balcells M., et al. Is it possible to substitute hexane with green solvents for extraction of carotenoids? A theoretical versus experimental solubility study // RSC advances. 2016. Vol. 6, № 3. P. 27750–27759. DOI: 10.1039/c6ra03016e.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Yara-Varon E, Fabiano-Tixier A, Balcells M, et al. Is it possible to substitute hexane with green solvents for extraction of carotenoids? A theoretical versus experimental solubility study. RSC advances. 2016;6(33):27750-27759. DOI: 10.1039/c6ra03016e.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B10">
    <label>10.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Ninčević G., Rimac B., Badanjak S., et al. Carotenoid content and profiles of pumpkin products and by-products // Molecules. 2023. Vol. 28, № 2. P. 858. DOI: 10.3390/molecules28020858.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Ninčević G, Rimac B, Badanjak S, et al. Carotenoid content and profiles of pumpkin products and by-products. Molecules. 2023;28(2):858. DOI: 10.3390/molecules28020858.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B11">
    <label>11.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Ouyang M., Huang Y., Wang Y., et al. Stability of carotenoids and carotenoid esters in pumpkin (Cucurbita maxima) slices during hot air drying // Food Chemistry. 2022. Vol. 367. P. 130710. DOI: 10.1016/j.foodchem.2021.130710.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Ouyang M, Huang Y, Wang Y, et al. Stability of carotenoids and carotenoid esters in pumpkin (Cucurbita maxima) slices during hot air drying. Food Chemistry. 2022;367:130710. DOI: 10.1016/j. foodchem.2021.130710.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B12">
    <label>12.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Joshi D., Adhikari N. An overview on common organic solvents and their toxicity // J. Pharm. Res. Int. 2019. Vol. 28, № 3. P. 1–18. DOI: 10.9734/jpri/2019/v28i330203.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Joshi D, Adhikari N. An overview on common organic solvents and their toxicity. J. Pharm. Res. Int. 2019;28(3):1-18. DOI: 10.9734/jpri/2019/v28i330203.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B13">
    <label>13.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Ветров П.П., Гарная С.В. Определение содержания липофильных веществ и суммы каротиноидов в растительном сырье // Химико-фармацевтический журнал. 1989. № 3. С. 34–38.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Vetrov PP, Garnaya SV. Opredelenie soderzhaniya lipofil'nyh veshchestv i summy karotinoidov v rastitel'nom syr'e. Himiko-farmacevticheskij zhurnal. 1989;3:34-38. (In Russ.).</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B14">
    <label>14.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Старовойтова К.В., Терещук Л.В., Сергеева И.Ю. Перспективные направления переработки растительного сырья с целью изучения фитохимических соединений для пищевых систем. В сб.: I международный конгресс «Новейшие достижения в области медицины, здравоохранения и здоровьесберегающих технологий»; 28–30 ноября 2022. Кемерово, 2022. С. 418–421. DOI: 10.21603/-i-ic-128.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Starovoitova K, Tereshchuk L, Sergeeva I. Future directions of vegetable raw material proctssing for extraction of phytochemical compounds for food systems. In: I International Congress «The Latest Achievements of Medicine, Healthcare, and Health-Saving Technologies». 2023. (In Russ.). DOI: 10.21603/-i-ic-128.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B15">
    <label>15.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Подолец А.М., Захаренко А.М., Разгонова С.А., и др. Инновационные методы извлечения полезных веществ из растительного сырья: обзор литературы // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024. Т. 54, № 3. С. 70–78.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Podolec AM, Zaharenko AM, Razgonova SA, et al. Innovacionnye metody izvlecheniya poleznyh veshchestv iz rastitel'nogo syr'ya: Obzor literatury. Sibirskij vestnik sel'skohozyajstvennoj nauki. 2024;54(3):70-78. (In Russ.).</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B16">
    <label>16.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Ачмиз А.А., Лисовая Е.В., Свердличенко А.В., и др. Характеристика существующих способов получения каротиноидов из растительного сырья и вторичных ресурсов его переработки // Новые технологии. 2022. Т. 18, № 2. P. 15–25. DOI: 10.47370/2072-0920-2022-18-2-15-25.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Achmiz AA, Lisovaya EV, Sverdlichenko AV et al. Harakteristika sushchestvuyushchih sposobov polucheniya karotinoidov iz rastitel'nogo syr'ya I vtorichnyh resursov ego pererabotki. New technologies. 2022;18(2):15-25. (In Russ.) .DOI: 10.47370/2072-0920-2022-18-2-15-25.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B17">
    <label>17.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Круглов Д.С. Спектрофотометрическое определение А-витаминной активности каротиноидосодержащего сырья // Journal of Siberian Medical Sciences. 2021. Vol. 4. P. 17–26. DOI: 10.31549/2542-1174-2021-4-17-26.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Kruglov DS. Spektrofotometricheskoe opredelenie A-vitaminnoj aktivnosti karotinoidosoderzhashchego syr'ya. Journal of Siberian Medical Sciences. 2021;4:17-26. (In Russ.). DOI: 10.31549/2542-1174-2021-4-17-26.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B18">
    <label>18.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Bonfigli M., Godoy E., Reinheimer M., et al. Comparison between conventional and ultrasound-assisted techniques for extraction of anthocyanins from grape pomace. Experimental results and mathematical modeling // Journal of food engineering. 2017. Vol. 207. P. 56–72. DOI: 10.1016/j.jfoodeng.2017.03.011.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Bonfigli M, Godoy E, Reinheimer M, et al. Comparison between conventional and ultrasound-assisted techniques for extraction of anthocyanins from grape pomace. Experimental results and mathematical modeling. Journal of food engineering. 2017;207:56-72. DOI: 10.1016/j.jfoodeng.2017.03.011.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B19">
    <label>19.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Hundie K. Optimization and Characterization of Ultrasound-Assisted Pectin Extracted from Orange Waste // Pak J Anal Environ Chem. 2021. Vol. 22, № 2. P. 344–357. DOI: 10.21743/pjaes/2021/12/13.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Hundie K. Optimization and Characterization of Ultrasound-Assisted Pectin Extracted from Orange Waste. Pak J Anal Environ Chem. 2021;22(2):344-357. DOI: 10.21743/pjaes/2021/12/13.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B20">
    <label>20.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Fooladi H., Mortazavi S., Rajaei A., et al. Optimize the extraction of phenolic compounds of jujube (Ziziphus Jujube) using ultrasound-assisted extraction method. 2013.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Fooladi H, Mortazavi S, Rajaei A, et al. Optimize the extraction of phenolic compounds of jujube (Ziziphus Jujube) using ultrasound-assisted extraction method. 2013.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B21">
    <label>21.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Табакаева О.В., Приходько Ю.В., Валевич А.Л. Кинетика извлечения биологически активных веществ из бурой водоросли S. Miyabei Дальневосточного региона разными способами экстракции // АПК России. 2022. Т. 29, № 3. С. 392–397. DOI: 10.55934/2587-8824-2022-29-3-392-397.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Tabakaeva OV, Prihod'ko YuV, Valevich AL. Kinetika izvlecheniya biologicheski aktivnyh veshchestv iz buroj vodorosli S. Mirabai Dal'evostochnogo regiona raznymi sposobami ekstrakcii. APK Rossii. 2022;29(3):392-397. (In Russ.). DOI: 10.55934/2587-8824-2022-29-3-392-397.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B22">
    <label>22.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Rozen A., Krupnov B. Dependence of the extraction ability of organic compounds on their structure // Russian chemical reviews. 1996. Vol. 65, № 11. P. 973. DOI:10.1070/RC1996v065n11ABEH000241.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Rozen A, Krupnov B. Dependence of the extraction ability of organic compounds on their structure. Russian chemical review. 1996;65(11):973. DOI: 10.1070/RC1996v065n11ABEH000241.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B23">
    <label>23.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Болотов В.М., Рудаков О.Б., Шершнева Е.В. Термоокисление β-каротина в растворе // Известия высших учебных заведений. Пищевая технология. 1997. Т. 4. С. 21–23.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Bolotov VM, Rudakov OB, Shershneva EV. Termookislenie β-karotina v rastvore. Izvestiya vysshih uchebnyh zavedenij. Pishchevaya tekhnologiya. 1997;4:21-23.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B24">
    <label>24.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Koyama Y., Takatsuka I., Nakata M., et al. Raman and infrared spectra of the all-trans, 7-cis, 9-cis, 13-cis and 15-cisisomers of L-carotene // J. of Raman Spectroscopy. 1988. Vol. 19, № 1. P. 37–49. DOI: 10.1002/jrs.1250190107.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Koyama Y, Takatsuka I, Nakata M, et al. Raman and infrared spectra of the all-trans, 7-cis, 9-cis, 13-cis and 15-cisisomers of L-carotene. J. of Raman Spectroscopy. 1988;19(1):37-49. DOI: 10.1002/ jrs.1250190107.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B25">
    <label>25.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Britton G., Liaaen-Jensen S., Pfander H. Carotenoids Handbook. Basel: Springer Basel AG; 2004.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Britton G, Liaaen-Jensen S, Pfander H. Carotenoids Handbook. Basel: Springer Basel AG; 2004.</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
   <ref id="B26">
    <label>26.</label>
    <citation-alternatives>
     <mixed-citation xml:lang="ru">Курегян А.Г., Печинский С.В. Получение каротиноидов и их идентификация методами спектроскопии в ИК- и УФ-областях // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2016. Т. 19, № 1. С. 22–27.</mixed-citation>
     <mixed-citation xml:lang="en">Kuregyan AG, Pechinskij SV. Poluchenie karotinoidov i ihidentifikaciy ametodami spektroskopii v IK- i UF-oblastyah. Voprosy biologicheskoj, medicinskoj i farmacevticheskoj himii. 2016;19(1):22-27. (In Russ.).</mixed-citation>
    </citation-alternatives>
   </ref>
  </ref-list>
 </back>
</article>
