Krasnodar, Krasnodar, Russian Federation
Krasnodar, Krasnodar, Russian Federation
Krasnodar, Russian Federation
VAK Russia 4.1.2
VAK Russia 4.1.3
VAK Russia 4.1.4
VAK Russia 4.1.5
VAK Russia 4.2.1
VAK Russia 4.2.2
VAK Russia 4.2.3
VAK Russia 4.2.4
VAK Russia 4.2.5
VAK Russia 4.3.3
VAK Russia 4.3.5
UDC 639.3.043
The aim of the study is to research the efficiency of using the microbiological complex BONAKA-APK-N in growing sterbel. Tasks: to determine the fish farming and biological parameters of growing sturgeon fry (sterbel); to establish feed consumption and costs per 1 kg of live weight gain of fish; to determine the composition of the intestinal microflora and blood serum of sturgeon fry when using the studied feed additive; to calculate the economic efficiency of using the microbiological complex BONAKA-APK-N with a probiotic effect in aquaculture. The studies were conducted at Albashi LLC (Krasnodar Region) in accordance with standard fish farming methods in 2023. The object of the research is sterbel underyearlings kept in fish farming pools under appropriate fish farming conditions. The subject of the study is the microbiological complex BONAKA-APK-N in growing sturgeon fry. The experimental period is 60 days, the number of fish in a group is 150 pcs. The fish weight in the experimental groups increased by 3.9–14.7 % (P < 0.05) relative to the control. The fish survival rate in all groups was 100 %. When using the microbiological complex BONAKA-APK-N, a decrease in feed costs per 1 kg of live weight gain of fish in all experimental groups was noted compared to the control by 7.0–18.0 % (P < 0.05). The use of the studied feed additive reduces the level of staphylococcus in the intestines of fish in the experimental groups by 3–4 orders of magnitude compared to the control. Biochemical parameters of fish blood serum were within the normal range. The use of the studied feed products allowed to increase the profitability of production by 26.0–69.0 % compared to the control.
sterbel, microbiological complex, probiotic effect, fish farming and biological parameters, feed costs per 1 kg of live weight gain, intestinal microflora composition, biochemical parameters of blood serum, economic efficiency
Распространенный в России гибридный вид осетровых стербел обладает быстрым ростом, высокой экономической и пищевой ценностью и хорошей устойчивостью к болезням. Его выращивание постепенно увеличивается в последние десятилетия.
Однако в результате быстрой интенсификации и расширения выращивания культивируемые гибридные осетровые столкнулись с серьезными проблемами заболеваний из-за бактерий, вирусов и экологического стресса, что привело к высокой смертности и огромным экономическим потерям во время производства.
Традиционно в рыбоводстве для борьбы с болезнями водных животных обычно используется множество химиотерапевтических препаратов и антибиотиков. Однако их постоянное и чрезмерное применение привело к загрязнению окружающей среды, биоаккумуляции остаточных антибиотиков, угнетению иммунных реакций, к угрозе здоровью населения, потребляющего в пищу продукцию аквакультуры, а также способствует развитию устойчивости к антибиотикам различных патогенных микроорганизмов. В условиях импортозамещения важно вести поиск новых кормовых средств отечественного производства, которые помогут перейти к органическому агро- и аквахозяйству [3–5].
С целью снижения применения антибиотикотерапии в аквакультуре было предложено множество альтернативных решений. Одно из них – применение пробиотических средств. Пробиотики имеют низкую стоимость, доступны и удобны в применении. Также пробиотические кормовые средства обеспечивают снижение частоты развития бактериальных заболеваний рыб и помогают преодолеть неблагоприятное воздействие антибиотиков. Кормовые средства на основе пробиотических микроорганизмов оказывают благотворное воздействие на организм рыб, ингибируя развитие патогенной микрофлоры кишечника, активируя иммунную защиту организма, тем самым обеспечивая рост продуктивности и выживаемости рыбы, что способствует увеличению рентабельности производства [6–8]. В последнее время возрос интерес к использованию пробиотиков в качестве натуральных кормовых добавок в питании водных животных.
Как правило, кишечная микрофлора играет решающую роль в состоянии питания хозяина, что считается важным модулятором иммунной системы у людей и животных и связано со множеством заболеваний, включая сердечно-сосудистые заболевания, жировую дистрофию печени, ожирение.
Изменения в составе и метаболической функции микробиоты кишечника коррелируют с состоянием здоровья кишечника.
Несколько исследований показали, что применение в аквакультуре кормовых средств на основе пробиотиков повышает приросты живой массы рыбы, иммунный ответ организма и устойчивость организма к болезням [9, 10].
Крайне важно изучить натуральные кормовые добавки, чтобы сократить использование химиотерапевтических препаратов или антибиотиков, которые эффективны для подавления заболеваний рыб, при выращивании гибридных осетровых.
Цель исследований: изучение эффективности применения микробиологического комплекса «БОНАКА-АПК-N» при выращивании стербела.
Задачи: определить рыбоводно-биологические показатели выращивания молоди стербела; установить потребление и затраты кормов на 1 кг прироста живой массы рыбы; определить состав микрофлоры кишечника и сыворотки крови молоди стербела при применении изучаемого кормового средства; рассчитать экономическую эффективность использования микробиологического комплекса «БОНАКА-АПК-N» с пробиотическим эффектом в аквакультуре.
Объекты и методы. Опыт был проведен в ООО «Албаши» Краснодарского края в 2023 г. Объектом исследования являлась молодь осетровых рыб (стербела). Рыбу содержали в специализированных рыбоводных бассейнах. Водоснабжение осуществлялось при помощи скважины. Применялась традиционная технология кормления осетровых рыб полнорационными комбикормами (ПК) «mix-line». Питательная ценность и состав ПК полностью соответствовали потребностям данного вида и возраста рыбы.
Предметом исследования являлся микробиологический комплекс «БОНАКА-АПК-N» – концентрированная культура молочнокислых, пропионовокислых и бифидобактерий. Состав консорциума подобран из селектированных штаммов микроорганизмов (в т. ч. Lactococcus, Lactobacillus, Bifidobacterium, Propionibacterium).
Начальная масса рыбы при постановке на опыт составляла 130 г. Опыт проведен по схеме, приведенной в таблице 1.
Условия содержания рыбы полностью соответствовали технологии рыборазведения. Период опыта – 60 дней, количество рыб в группе – 150 шт.
Количество кормовой добавки для всех опытов – 950 г, полнорационного комбикорма – 200 кг.
Взвешивание рыбы и измерение длины туловища проводилось индивидуально в начале, середине и в конце опытного периода.
Лабораторные экспертизы проводились в ФГБОУ ВО «Ейский морской рыбопромышленный техникум» и ФГБНУ «Краснодарский научный центр по зоотехнии и ветеринарии».
Таблица 1
Схема опыта
The scheme of experience
|
Группа |
Характеристика кормления |
|
1 |
ПК (полнорационный комбикорм) |
|
2 |
ПК + 0,2 % «БОНАКА-АПК-N» |
|
3 |
ПК + 0,4 % «БОНАКА-АПК-N» |
|
4 |
ПК + 0,6 % «БОНАКА-АПК-N» |
|
5 |
ПК + 0,6 % «Пролам» |
|
6 |
Добавление в воду бассейна 0,005 % «Бонака-АПК-N» |
Результаты и их обсуждение. Выявлено, что регулярное добавление в воду рыбоводного бассейна суспензии «БОНАКА-АПК-N» способствует увеличению водородного показателя рН в сторону кислотности.
Рыбоводно-биологические показатели выращивания рыбы приведены в таблице 2.
В опыте на молоди стербела живая масса рыбы максимально повысилась в четвертой группе – на 14,7 % (P < 0,05); в пятой – на 9,5 % (P < 0,05); в 6 – на 7,7 % относительно контроля.
Длина тела у рыб в опытных группах достоверно не отличалась от контрольной.
Таблица 2
Рыбоводно-биологические показатели выращивания молоди стербела
Fish-breeding and biological indicators of the cultivation of juvenile sterbel
|
Показатель |
Группа |
|||||
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
|
|
Начальная живая масса рыб, г |
130,0±0,02 |
130,0±0,02 |
130,0±0,02 |
130,0±0,02 |
130,0±0,02 |
130,0±0,02 |
|
Конечная живая масса рыб, г |
196,3±0,2 |
204,0±0,2 |
205,4±0,2 |
225,2±0,2* |
215,0±0,2* |
211,5±0,2* |
|
Среднесуточный прирост, г |
1,1 |
1,2 |
1,2 |
1,5 |
1,4 |
1,3 |
|
Длина тела спустя 30 дней выращивания, см |
17,6±0,1 |
17,9±0,1 |
17,9±0,1 |
18,0±0,1 |
17,7±0,1 |
17,6±0,1 |
|
Выживаемость рыбы, % |
100,0 |
100,0 |
100,0 |
100,0 |
100,0 |
100,0 |
Примечание: (*) – различия при P < 0,05 по отношению к контролю.
Гибели рыбы не было во всех группах.
Рыба потребляла 98,0–119,3 г корма на 1 голову. В контроле затраты корма на 1 кг прироста живой массы составили 1,8 кг. Снижение затрат корма на 1 кг прироста в сравнении с контролем наблюдалось во 2-й группе на 7,0 % (P < 0,05); в 3-й – на 17,9 (P < 0,05); в 4-й – на 12,2 (P < 0,05); в 5-й – на 7,4 (P < 0,05); в 6-й – на 11,2 % (P < 0,05). Состав микрофлоры кишечника осетровых приведен в таблице 3.
При применении изучаемых кормовых средств следует отметить снижение уровня стафилококка во всех группах опыта на 3–4 порядка относительно контрольной группы.
По остальным видам патогенов значительных разниц с контролем и опытом отмечено не было.
Биохимические показатели сыворотки крови рыб находились в пределах референсных интервалов.
Валовой прирост разнился по группам: во 2-й – на 1,2 кг; в 3-й – на 1,4; в 4-й – на 4,4; в 5-й – на 2,8; в 6-й – на 2,3 кг.
Производственные затраты по сравнению с контрольной группой были снижены во 2-й группе на 140,00 руб.; в 3-й – на 365,00; в 4-й – на 205,00; в 5-й – на 87,00; в 6-й – на 263,00 руб.
Таблица 3
Состав микрофлоры в кишечнике молодняка стербела, КОЕ/г
Composition of microflora in the intestines of young animals, CFU/g
|
Группа |
Кишечная палочка |
Сенная палочка |
Стафилококк |
Энтерококк |
|
1 |
6 ∙ 107 |
2,2 ∙ 105 |
1 ∙ 106 |
5 ∙ 103 |
|
2 |
5 ∙ 106 |
3,8 ∙ 105 |
1 ∙ 103 |
3 ∙ 103 |
|
3 |
4 ∙ 107 |
3,8 ∙ 104 |
1 ∙ 103 |
3 ∙ 103 |
|
4 |
3 ∙ 106 |
3,0 ∙ 104 |
1 ∙ 103 |
1 ∙ 103 |
|
5 |
3 ∙ 107 |
3,8 ∙ 104 |
3 ∙ 103 |
3 ∙ 103 |
|
6 |
4 ∙ 107 |
4,8 ∙ 106 |
1 ∙ 102 |
2 ∙ 103 |
Стоимость валовой продукции во 2-й группе была больше на 1560,00 руб.; в 3-й – на 1820,0; в 4-й – на 5720,00; в 5-й – на 3640,00; в 6-й – на 2990,00 руб.
Себестоимость 1 кг прироста массы рыбы во 2-й группе сократилась на 12,0 %; в 3-й – на 16,0; в 4-й – на 32,0; в 5-й – на 22,0; в 6-й – на 21,0 %.
Прибыль во 2-й группе увеличилась на 1700,00 руб., в 3-й – на 2185,00; в 4-й – на 5925,00; в 5-й – на 3727,00; в 6-й – на 3253,00 руб.
Максимальный экономический эффект был в 4-й группе (5925,00 руб. дополнительной прибыли). Уровень рентабельности в контроле был равен 32,19 %; во 2-й группе составил 40,49 %; в 3-й – 43,07; в 4-й – 54,15; в 5-й – 47,66; в 6 – 46,63 %.
Заключение. При выращивании сеголетков осетровых рыб рекомендуется использование микробиологического комплекса «БОНАКА-АПК-N» компании ООО «БОНАКА» в количестве 0,6 % от количества комбикорма. Данная кормовая добавка положительно влияет на рыбоводно-биологические показатели рыбы, активна в отношении некоторых патогенов, а также повышает рентабельность отрасли аквакультуры. Живая масса рыбы максимально повысилась в 4-й группе – на 14,7 % (P < 0,05); в 5-й – на 9,5 (P < 0,05); в 6 – на 7,7 % относительно контроля. В контроле затраты корма на 1 кг прироста живой массы составили 1,8 кг. Снижение затрат корма на 1 кг прироста в сравнении с контролем наблюдалось во 2-й группе на 7,0 % (P < 0,05); в 3-й – на 17,9 (P < 0,05); в 4-й – на 12,2 (P < 0,05); в 5-й – на 7,4 (P < 0,05); в 6-й – на 11,2 % (P < 0,05).
1. Bronzi P., Rosenthal H. Present and future sturgeon and caviar production and marketing: A global market overview. Journal of Applied Ichthyology. 2014;30(6):1536-1546. DOI:https://doi.org/10.1111/jai.12628.
2. Rzepkowska M, Głowacka DK, Szczepkowski M, et al. Hepatotoxic effect of dietary phytoestrogens on juvenile cultured Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii). Aquatic Toxicology. 2023;261:106639. DOI:https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2023.106639. EDN: https://elibrary.ru/SBBCDP.
3. Yurin DA, Danilova AA, Maxim EA, et al. Studying reproductive feed application for sturgeon. Bulletin of KSAU. 2023;4:149-154. DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2023-4-149-154. EDN: https://elibrary.ru/QJAIAG.
4. Mistratova NA, Kolomeytsev AV, Yanova MA. The analysis of foreign experience of making and realization of organic production of agriculture. Bulletin of KSAU. 2018;2:162-165. EDN: https://elibrary.ru/YWLUVE.
5. Wang A, Ran C, Wang Y, et al. Use of probiotics in aquaculture of China – a review of the past decade. Fish & Shellfish Immunology. 2019;86:734-755. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.12.026.
6. Hoseinifar SH, Ringo E, Shenavar MA, et al. Probiotic, prebiotic and synbiotic supplements in sturgeon aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture. 2016;8(1):89-102. DOI:https://doi.org/10.1111/raq.12082. EDN: https://elibrary.ru/WUYOVN.
7. Reda RM, El-Hady MA, Selim KM, et al. Comparative study of three predominant gut Bacillus strains and a commercial B. amyloliquefaciens as probiotics on the performance of Clarias gariepinus. Fish & Shellfish Immunology. 2018;80:416-425. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.06.031.
8. Cai Y, Yuan W, Wang Sh, et al. In vitro screening of putative probiotics and their dual beneficial effects: To white shrimp (Litopenaeus vannamei) postlarvae and to the rearing water. Aquaculture. 2019;498:61-71. DOI:https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.08.024.
9. Zaineldin AI, Hegazi S, Koshio S, et al. Bacillus subtilis as probiotic candidate for red sea bream: Growth performance, oxidative status, and immune response traits. Fish & Shellfish Immunology. 2018;79:303-312. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.05.035.
10. Newaj-Fyzul A, Al-Harbi AH, Austin B. Review: Developments in the use of probiotics for disease control in aquaculture. Aquaculture. 2014;431:1-11. DOI:https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2013.08.026.
